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Forese e vetores mecânicos

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De acordo com a Wikipedia e a Parasitologia Humana Por Burton Jerome Bogitsh, Clint Earl Carter, Thomas N. Oeltmann

Forese: neste tipo de relação simbiótica, o foronte, geralmente o organismo menor, é mecanicamente carregado pelo outro organismo, geralmente maior, o hospedeiro.

Então, o hospedeiro que atua como portador pode ser chamado de vetor mecânico?

Ao pesquisar em google.books, encontrei alguns livros que mencionam:

Como parasitologia clínica

Os hospedeiros que transmitem parasitas ao homem são vetores. Aqueles que são essenciais no ciclo de vida são vetores biológicos; aqueles que não são essenciais são vetores foréticos ou mecânicos.


Um vetor mecânico, assim como o vetor biológico, transfere um parasita para seu hospedeiro obrigatório, mas carregando-o na superfície de seu corpo, enquanto o hospedeiro em forese não carrega necessariamente um foronte para um hospedeiro obrigatório (para interação parasitária).

Uma relação parasita-vetor mecânico é possivelmente uma espécie de forese.


Transmissão de vírus de plantas: 8 métodos | Virologia

Os pontos a seguir destacam os oito métodos principais usados ​​para a transmissão de vírus de plantas. Os métodos são: 1. Transmissão de sementes de vírus 2. Transmissão por propagação vegetativa 3. Transmissão por meios mecânicos 4. Transmissão por cuscuta 5. Transmissão de solo 6. Transmissão de insetos 7. Transmissão por fungos 8. Alguns vírus que habitam o solo têm vetores nematóides.

Método # 1. Transmissão Semente de Vírus:

A transmissão através das sementes da planta hospedeira foi considerada anteriormente como tendo um papel menor na propagação de doenças virais. Recentemente, Bennett (1969) listou 53 vírus que são transmitidos por sementes de cerca de 124 espécies de plantas.

As sementes são importantes na disseminação de alguns vírus de leguminosas, pepino selvagem, tomate e vírus de topo crespo do açúcar de beterraba. Neste último caso, as sementes carregam uma alta porcentagem do vírus. O vírus, porém, não entra no embrião. É transportado em uma porção da semente das plantas doentes.

Método # 2. Transmissão por Propagação Vegetativa:

É um dos principais métodos de transmissão de doenças virais principalmente da Batata, Rosa, Cana-de-açúcar, Framboesa, Morango, Nabo, Bulbo, árvores frutíferas e muitas plantas ornamentais.

As partes vegetativas, as plantas infectadas como os tubérculos, bulbos, raízes, brotos, brotos e mudas que são usados ​​para a propagação, irão conter o vírus presente no pai. As novas plantas criadas pelos métodos vegetativos mencionados acima estão quase sempre infectadas.

Método # 3. Transmissão por meios mecânicos:

Muitos vírus de mosaico são transmitidos mecanicamente de plantas doentes para plantas saudáveis ​​pelos seguintes métodos:

(i) Por contato de folhas infectadas e saudáveis ​​provocadas pelo vento.

(ii) Esfregando o suco das plantas doentes sobre a superfície das folhas de plantas saudáveis.

(iii) Enxertando botões infectados em plantas saudáveis.

(iv) Os implementos agrícolas também desempenham um papel bastante importante. A faca usada para cortar os pedaços de sementes e a tesoura de poda espalham a doença.

(v) Alguns vírus se espalham abaixo do solo pelo contato entre as raízes de plantas doentes e saudáveis.

(vi) O manejo das plantas na época do plantio e na operação cultural também ajudará na disseminação de vírus como a beterraba sacarina. Vírus do Curly Top e Cucumber mosaic virus.

Método # 4. Transmissão por Cuscuta:

Em muitos casos, Dodder (Cuscuta) serve como um agente transmissor e uma ponte eficaz entre o hospedeiro infectado e as plantas saudáveis, estabelecendo contato biológico íntimo por meio de seus haustórios.

Método # 5. Transmissão do solo:

Muitos vírus são transmitidos pelo solo. Exemplos comuns de vírus transmitidos pelo solo são o vírus do mosaico da batata, o mosaico da aveia, o mosaico do trigo, etc. Em todos esses casos, a doença é contraída do solo.

Método # 6. Transmissão de insetos:

Alguns vírus de plantas e animais são disseminados e partículas completas são introduzidas nas células hospedeiras por vetores artrópodes e até mesmo por mordidas de cachorro, como na raiva. Entre os artrópodes os mais importantes agentes de propagação de doenças virais são os insetos.

O inseto que carrega a doença é denominado vetor. Os insetos vetores que desempenham um papel importante na disseminação dos vírus de plantas são os pulgões, cigarrinhas, escaravelhos da fuga, cochonilhas, cigarrinhas e moscas brancas.

A maioria dos insetos vetores são insetos sugadores. Os pulgões transmitem mais vírus de plantas do que quaisquer outros insetos. Cigarrinhas vêm em seguida na lista. Sabe-se que cerca de trezentas doenças de vírus de plantas têm vetores de inserção.

A inserção obtém o vírus através de suas partes bucais no momento de se alimentar da planta doente. Em seguida, é inoculado na planta sã por meio da parte bucal. Em muitos casos, a inoculação deve ocorrer em um determinado tecido ou em folhas jovens.

O vírus pode permanecer ativo no corpo do vetor por muitos dias. No entanto, são conhecidos casos em que a infecciosidade é logo perdida. Também há casos em que um vetor não pode infectar uma planta saudável imediatamente após ela ter se alimentado de uma planta doente.

Há atraso no desenvolvimento de poder infeccioso dentro do vetor. Este período de desenvolvimento da infecciosidade do vírus dentro do vetor é denominado período de incubação. A duração do período de incubação varia com diferentes vírus de algumas horas a dias

Também parece haver alguma relação entre os vírus das plantas e os insetos vetores que os transmitem. A natureza precisa dessa relação ainda é desconhecida. O vírus da beterraba, conhecido como folha crespa ou topo crespo, é transmitido pelo funil Circulifer tenellus.

Outros insetos sugadores que se alimentam de beterraba sacarina são incapazes de transmitir este vírus. Por outro lado, o pulgão do pêssego é o vetor do vírus do mosaico da beterraba sacarina. A cigarrinha não transmite esse vírus. Thirps transmite o vírus manchado-murcha. Todos os vetores do grupo amarelo de vírus são cigarrinhas e do grupo mosaico são pulgões.

Método # 7. Transmissão por Fungi:

A primeira prova do fungo como vetor de vírus de plantas foi encontrada por Gorgon em 1958. Fie descobriu que a alface doente era invariavelmente infectada por um quitrídeo do solo, o Olpidium. Mais tarde, ele descobriu que o fungo atua como reservatório e vetor do vírus das veias grandes.

O vírus adquirido pelo fungo permanece no oósporo. Este último germina e produz os zoósporos que funcionam como agentes infecciosos e penetram nas raízes da alface. Similarmente, o vírus da necrose do tabaco foi relatado por Teakle (1960) para entrar nas raízes de seu hospedeiro pelos zoósporos de O. brassicae.

Método # 8. Alguns vírus que habitam o solo têm vetores nematóides:

Os vírus animais podem obter acesso aos animais superiores através da boca e do nariz por meio de poeira ou alimentos contaminados. Além da infecção externa, o vírus também pode ser transmitido de célula para célula, mas a transmissão interna não precisa ser na forma de partículas de vírus.


ANTES DE COMEÇARMOS. UMA ESPÉCIE É BINOMIAL

O cientista sueco Carolus von Linnaeus (1707-1778) desenvolveu o sistema binomial de nomenclatura que ainda é usado hoje. Como exemplo, vamos usar as espécies Homo sapiens ("humanos" para vocês, biólogos moleculares). Homo é o gênero, sapiens é o nome trivial (Nomen Triviale ou epíteto específico), e juntos eles formam a espécie. O epíteto sapiens NÃO é a espécie, embora alguns textos muito básicos digam erroneamente que é. Lembrar. uma espécie é binomial ("dois nomes").

Agora, alguém poderia pensar que minha explicação simples seria suficiente. mas não será para alguns de vocês. Você vai querer testar isso em seu primeiro exame. Eu terei algumas perguntas no exame onde (por exemplo) eu pergunto sobre o gênero e a maioria dos alunos escreverá corretamente "Homo". Alguns de vocês, no entanto, tentarão redesenhar a pergunta e a resposta "Homo sapiens". Isso não está correto porque você deu a espécie, NÃO o gênero. Então, em outras questões, vou perguntar aos alunos sobre a espécie e eles vão escrever "sapiens" ou "H. sapiens", que estão incorretos porque o que foi fornecido é o nome trivial em vez da espécie (novamente, uma espécie é ambos nomes. binomial).

Então, para aprofundar este exercício um pouco mais, digamos que eu peço a você que escreva a espécie para a mosca-bóton humana. A resposta correta é Dermatobia hominis. No entanto, alguns de vocês escreverão "D. hominis", que é uma abreviatura incorreta e poderia muito bem se referir à bactéria, Dermabacter hominis. Mais comumente, muitos de vocês simplesmente escreverão "hominis", que será MUITO incorreto e pode se referir a espécies como a bactéria Actinobaccillus hominis, Cardiobacterium hominis, Dermabacter hominis, Facklamia hominis, ou Staphlococcus hominis, o micoplasma Mycoplasma hominis, os protistas parasitas Blastocystis hominis, Enteromonas hominis, Pentatrichomonas hominis, Sarcocystis hominis, ou Trachipleistophora hominis, ou mesmo o digene Gastrodiscoides hominis. Agora, também podemos usar o epíteto "coli" como um exemplo (ou seja, Escherichia coli, Balantidium coli, Entamoeba coli. ) Preciso dizer mais?


Identificação de baratas como vetor mecânico para infecções e infestações parasitárias em Kuantan, Malásia

Antecedentes e objetivos: As baratas são consideradas uma praga doméstica desagradável devido à sua natureza, que pode se alimentar de quase tudo. Acredita-se que as baratas sejam os vetores mecânicos de muitos tipos de parasitas. Como esse inseto noturno se move indiscriminadamente de um lugar para outro, a capacidade de rastejar em todos os cantos e fendas pode fazer com que ele pegue vários patógenos e parasitas que podem ser transmitidos aos humanos. O presente estudo teve como objetivo identificar os parasitas transportados por baratas de duas barracas de comida e dois restaurantes em Indera Mahkota, Kuantan. Materiais e métodos: As baratas capturadas em espécies de Periplaneta americana. As amostras de baratas foram coletadas usando armadilhas plásticas e armadilhas pegajosas. As amostras foram processadas com solução salina normal para obtenção de parasitas. A solução salina normal com as baratas recém-mortas foi agitada vigorosamente e observada sob microscópio de luz para identificar a presença de parasitas. Resultados: A identificação de baratas mostrou que a maioria dos parasitas encontrados foram ácaros. Outros parasitas encontrados, incluindo Strongyloides ovos, Strongyloides larvas e Ascaris ovos. Não houve cisto de protozoário encontrado em todas as amostras de baratas no presente estudo. O número de parasitas transportados das baratas capturadas nas barracas foi maior em comparação com o número de parasitas das baratas capturadas no restaurante. O baixo nível de higiene nas barracas facilita a infestação de baratas na barraca em comparação com o restaurante. Conclusão: Assim, as baratas servem como transportadoras de endoparasitas e ectoparasitas. Os achados do presente estudo sugerem que medidas preventivas adequadas, como a manutenção da limpeza das barracas e restaurantes, podem prevenir a infestação de baratas.

Afzan Mat Yusof, 2018. Identificação de baratas como vetor mecânico para infecções e infestações parasitárias em Kuantan, Malásia. Journal of Entomology, 15: 143-148.

Baratas são insetos comumente encontrados na maioria das construções feitas pelo homem 1. Um ambiente quente e úmido, especialmente na cozinha, banheiro, sistema de drenagem e até mesmo esgoto são os habitats mais favoráveis ​​para as baratas. As condições dos habitats das baratas também são um ambiente muito adequado para patógenos, como bactérias e parasitas. Acredita-se que o matéria orgânica e o fluido que sendo descarregado em tal local atraiu as baratas 2. À medida que as baratas rastejam por todos os lugares ativamente à noite, as baratas podem pegar vários patógenos de habitats sujos e ser transmitidas para outros lugares 3. A situação mais temida é quando as baratas carregam os patógenos para locais que servem comida, como restaurantes e barracas. Os estabelecimentos alimentares que não apresentam boas práticas de higiene costumam ter alto número de infestações de baratas. Os patógenos serão recolhidos enquanto a barata rasteja por todos os lugares, pois de habitats sujos podem ser transmitidos e contaminar a fonte do alimento e também contaminar os utensílios utilizados no preparo dos alimentos 4.

As baratas mais comuns encontradas em habitações humanas são baratas americanas (Periplaneta americana) e baratas alemãs (Blatta germanica) 1. Essas espécies de baratas são tipicamente encontradas em regiões tropicais e subtropicais 5. As baratas habitam edifícios como casas, fábricas, locais de alimentação e esgotos. Essas espécies de pragas domiciliares preferem ambientes úmidos e quentes com fontes de alimento abundantes 6. Barata americana (Periplaneta americana) é a maior espécie de barata comum 7. Comumente, as baratas se alimentam de quase tudo, especialmente de produtos amiláceos, matéria em decomposição, substâncias orgânicas e até fezes humanas 6. Como as baratas se alimentam de fezes humanas, os patógenos entéricos das fezes serão alojados no corpo das baratas e esses patógenos podem ser transmitidos aos humanos. Um estudo havia sido feito mostrando que várias espécies de patógenos entéricos podem ser isoladas de baratas 5. As bactérias isoladas são Escherichia coli, Estafilococo spp., Salmonella spp. e Shigella spp. 5

Entre os importantes parasitas transportados pelas baratas estão os ovos de helmintos. Os helmintos importantes do ponto de vista médico incluem os helmintos transmitidos pelo solo. As espécies de helmintos isolados de baratas são Ascaris lumbricoides, Strongyloides stercoralis e Trichuris trichiura 8,9. Esses helmintos são responsáveis ​​pela carga parasitária denominada helmintíase e podem causar doenças graves em humanos 10. Além de ovos de helmintos, a barata também atua como vetor de transmissão de cistos de protozoários 11. Cryptosporidium spp., Giardia spp., Entamoeba histolytica e Entamoeba coli são encontrados no corpo das baratas e também no intestino 11. O protozoário intestinal pode causar doenças como diarreia, desnutrição e desconforto intestinal 11. A prevalência de parasitas intestinais humanos, como cistos de protozoários transportados por baratas, é muito alta devido ao manejo inadequado do saneamento 12.

Na Malásia, existem poucos estudos feitos relativos a baratas. Um dos estudos anteriores foi realizado em Selangor para identificar bactérias importantes do ponto de vista médico transportadas por baratas. O estudo relatou o resultado positivo para bactérias como Salmonella spp., Shigella spp. e Escheria coli isolado do corpo das baratas 5. Outro estudo feito sobre o nível de infestações de baratas em áreas residenciais humanas. Um estudo realizado em 1997 em Kuala Lumpur revelou que Periplaneta spp. foram encontrados em grande número em comparação com outras espécies de baratas em habitats humanos 12. Enquanto isso, um estudo feito em áreas residenciais em Pulau Pinang revelou que a barata americana (Periplaneta americana) foi relatado como a espécie dominante capturada na área residencial humana 13. O número de baratas capturadas depende do nível de saneamento do local de amostragem 13. No entanto, nenhum dos estudos foi feito para determinar a ocorrência de infecções parasitárias em baratas.

Para o melhor conhecimento do autor, não há nenhum outro estudo feito na Malásia a respeito da transmissão mecânica de parasitas por baratas. Assim, este foi o primeiro estudo a identificar os parasitas transportados por baratas de duas barracas de comida em restaurantes e duas em Indera Mahkota, Kuantan. O achado da pesquisa pode ser usado para planejar um esforço estratégico para controlar a população de baratas na Malásia, aumentando assim a consciência sobre o potencial das baratas como vetores de parasitas nocivos.

MATERIAIS E MÉTODOS

Amostragem de baratas: Um total de 176 baratas (adultos e ninfas) foram apanhados em duas barracas de comida FS1 (3 & deg49 & rsquo20.874 & rdquoN 103 & deg18 & rsquo15.772 & rdquoE), FS2 (3 & deg49 & rsquo22.339 & rdquoN 103 & degsquoN 103 & rsquoE & rsquo. 3 & deg49 & rsquo25.499 & rdquoN 103 & deg18 & rsquo44.600 & rdquoE) em Indera Mahkota, Kuantan. Das barracas de comida, 49 baratas capturadas no FS1 e 49 baratas capturadas no FS2. Enquanto isso, o número de baratas capturadas no restaurante foi de 38 baratas de R1 e outras 40 baratas de R2. As áreas de amostragem no presente estudo foram escolhidas com base no nível de higiene do entorno. As baratas foram capturadas usando armadilhas de plástico e também armadilhas pegajosas. As armadilhas foram iscadas e armadas por 8-12 h todos os dias durante 4 meses a partir de novembro de 2017 até fevereiro de 2018. As armadilhas foram armadas da noite às 18h até as 8h da manhã em vários locais nas instalações escolhidas. Os locais de colocação das armadilhas foram em local escuro e úmido no interior das instalações, principalmente na cozinha e embaixo da pia. As baratas foram separadas de acordo com o local de coleta onde as baratas foram capturadas para evitar qualquer contaminação cruzada que pudesse interferir no resultado.

Identificação de espécies de baratas: A barata capturada foi identificada por sua espécie por suas características físicas e distintivas. A identificação foi feita observando-se a aparência com base nas referências da literatura. A barata mais comum na Malásia é da espécie Periplaneta americana 5 Adulto Periplaneta americana tem corpo marrom-avermelhado com faixa marrom-amarelada na borda do pronoto. O tamanho do adulto Periplaneta americana tem cerca de 3-4 cm e as asas são mais longas que o corpo. Enquanto isso, a ninfa do Periplaneta americana tem corpo castanho-avermelhado mas sem asas 14. Outra espécie de barata comumente encontrada na Malásia é conhecida como barata alemã ou Blatella germanica 5 . O tamanho da barata alemã é entre 1,1-1,6 cm, o que a torna muito menor do que a barata americana. A cor do corpo vai do marrom claro ao escuro e possui duas estrias escuras aproximadamente paralelas no pronoto até a base das asas 1,15. Neste estudo, as baratas capturadas eram do Periplaneta americana espécies. Não havia Blatella germanica identificados a partir da amostragem.

Processamento de amostra: As amostras foram processadas no laboratório do Central Research and Animal Facility (CREAM), Kulliyyah of Science, Universidade Islâmica Internacional da Malásia (IIUM), Kuantan. As baratas foram colocadas em recipientes herméticos de acordo com o local de coleta. Uma bola de algodão foi embebida em clorofórmio e adicionada ao recipiente hermético para enfraquecer e matar as baratas. Depois que as baratas foram mortas, todas elas foram processadas imediatamente para observação de quaisquer patógenos carregados nas áreas de superfície do corpo. O método de processamento de amostras para obtenção dos patógenos do corpo externo da barata foi ligeiramente modificado 8,9. Cada barata foi colocada em um tubo cheio com 5 mL de solução salina normal e foi agitada vigorosamente por 2 min. O tubo foi centrifugado a 2.000 rpm durante 5 min. Os sedimentos depositados por centrifugação foram coletados com pipeta e transferidos para lâminas de vidro para exame microscópico. Este estudo enfoca a barata como vetor mecânico de parasitas, em vez de vetor biológico. Portanto, o isolamento dos parasitas das baratas foi feito apenas a partir da superfície externa das baratas.

Técnicas de coloração e exame microscópico: Dois tipos de técnicas de coloração foram usados ​​para o exame microscópico, a saber, usando 1% de iodo Lugol & rsquos e coloração ácido-resistente. Iodo de Lugol & rsquos foi usado para realçar a imagem dos ovos de helmintos 16. Os sedimentos obtidos da sedimentação por centrifugação foram coletados com pipetas Pasteur estéreis. Uma gota do sedimento foi colocada na lâmina de microscópio. Em seguida, uma gota de iodo Lugol & rsquos foi adicionada à lâmina. Os sedimentos e o iodo Lugol & rsquos foram misturados completamente usando outra pipeta Pasteur estéril antes de ser coberta com lamínula. A lâmina foi examinada em microscópio de luz com ampliação total de 100x e 400x. A coloração ácido-resistente ou a coloração de Ziehl-Neelsen modificada foi usada neste experimento para observar parasitas coccidianos 17. Uma gota de sedimentos foi colocada na lâmina para secar ao ar. A solução de fucsina de carbol foi inundada na lâmina e ligeiramente aquecida. Carbol fucsina foi deixada para manchar a lâmina por 5 min antes de ser enxaguada com água destilada. A lâmina foi descolorada por imersão em álcool ácido 3% por 30 segundos. Em seguida, a lâmina foi enxaguada com água destilada. Posteriormente, a lâmina foi contra-corada por imersão em verde malaquita por cerca de 1 min. A lâmina foi posteriormente enxaguada com água destilada e deixada secar. A lâmina foi examinada em microscópio de luz.

Prevalência de baratas portadoras de parasitas capturadas em dois restaurantes e duas barracas de comida em Indera Mahkota, Kuantan: A Tabela 1 mostrou um número total de baratas e número de baratas hospedando os parasitas na superfície corporal. O maior número de baratas hospedando parasitas na superfície do corpo foi das baratas capturadas no FS1. A porcentagem de baratas com parasitas é maior no FS1 (83,67%), seguido do FS2 (73,47%), R2 (40,00) e finalmente R1 (23,68%).

Prevalência de parasitas encontrados na superfície corporal de baratas: Os dados da Tabela 2 mostram os tipos de parasitas veiculados pelas baratas capturadas no local da coleta em Indera Mahkota, Kuantan. Cada local de amostragem apresentou resultados positivos para ácaros. Vários ovos de helmintos foram identificados na superfície do corpo de baratas capturadas em R1, FS1 e FS2. Strongyloides spp. ovos foram encontrados nas amostras de baratas de R1 e FS1. Enquanto isso, larvas de nematóides de Strongyloides spp. foram encontrados em amostras de baratas coletadas no FS1. Enquanto isso, Ascaris spp. ovos foram encontrados nas amostras de baratas coletadas no FS2. Apenas as amostras de baratas de R2 eram portadoras de ácaros e negativas para ovos e larvas de helmintos. Nenhum cisto de protozoário foi encontrado em todas as amostras de baratas coletadas em Indera Mahkota, Kuantan.

Neste estudo, as amostras de baratas coletadas em vários estabelecimentos alimentares em Indera Mahkota, Kuantan foram positivas para parasitas intestinais, incluindo helmintos (Strongyloides stercoralis, Ascaris lumbricoides e ancilostomíase) e ectoparasita (ácaros). Enquanto isso, o corpo externo das baratas era negativo com os parasitas protozoários. Este estudo especulou fortemente que a ocorrência de Strongyloides stercoralis, Ascaris lumbricoides e a ancilostomíase também pode ser devida à espessa superfície da parede do ovo, conferindo resistência e longa sobrevivência na superfície corporal das baratas. Enquanto isso, a ocorrência negativa de protozoários parasitas pode ter sido devido à espessura da parede dos cistos de protozoários que podem não ser resistentes o suficiente para sobreviver em relação ao meio ambiente nesta área de estudo. Isso também corroborou pesquisas anteriores sobre helmintos como os parasitas intestinais de maior prevalência em comparação com a sobrevivência de parasitas protozoários em baratas devido à espessura da parede dos ovos dos helmintos 18.

Além disso, não foi encontrado nenhum cisto de protozoário entérico, o que pode ser devido aos diferentes níveis de saneamento na área de estudo circundante. Esse achado corresponde ao estudo feito na região do Delta do Níger, na Nigéria, onde o número de helmintos isolados de barata era maior se ela fosse capturada em local anti-higiênico e em contato com solo contaminado com fezes 19. Quanto menor o nível de higiene sugeria que havia maior possibilidade de as baratas entrarem em contato com objetos contaminados.

Os achados também indicaram que a má prática de destinação do lixo pelos estabelecimentos de restaurantes e barracas observados nesta área pode ter contribuído para a contaminação por helmintos desses corpos externos de baratas. Os resultados estão de acordo com um estudo anterior feito por Morenikeji et al. 20 no estado de Oyo, Nigéria. O estudo revelou que de um total de 23 baratas eram portadores de helmintos conhecidos como Strongyloides stercoralis, acaso e Enterobius vermicularis externamente. Nenhum dos corpos externos das baratas foi positivo para protozoários. Os autores afirmaram que a maior prevalência de helmintos pode ser devido à prática inadequada de descarte de resíduos em sua área de estudo. Conseqüentemente, essas eram as formas possíveis pelas quais as baratas podiam entrar em contato com os parasitas intestinais dos helmintos.

No entanto, este estudo contrasta com vários estudos anteriores que conseguiram identificar tanto helmintos quanto protozoários nas baratas externas 21-23. Por exemplo, um estudo feito pelas descobertas de El-Sherbini e El-Sherbini descobriu Entamoeba histolytica, Balantidium coli, Ascaris lumbricoides, Ancylostoma duodenale, Enterobius vermicularis, Trichuris trichuria e Strongyloides stercoralis das baratas externas nas instalações 22. Apesar deste estudo não ter revelado nenhum protozoário parasita, o estudo corrobora com a conclusão dos autores de que as baratas podem levar à transmissão de doenças parasitárias.

Destaca-se a presença de ácaros na superfície externa de baratas nos restaurantes e barracas deste estudo. As baratas capturadas nas barracas de comida transportam mais ácaros do que as baratas capturadas nos restaurantes. Isso pode ser devido ao ambiente ao redor das barracas de comida ser úmido e sujo, que serve como um bom habitat para ácaros e baratas. A presença de ácaros na superfície externa das baratas pode ser detectada quando uma barata rasteja por todos os lados. Os ácaros da poeira podem prosperar em todas as famílias. As áreas cobertas, como sob os móveis domésticos que têm muita poeira, são um habitat próspero para os ácaros 14,24. Como as áreas cobertas também podem fornecer proteção para as baratas, é possível que os ácaros sejam apanhados pelas baratas, pois as baratas se escondiam em locais escuros e úmidos durante o dia.

No geral, a limitação deste estudo é que a identificação foi baseada exclusivamente na coloração e microscopia direta para identificar os parasitas nas baratas externas. Ao incorporar a análise molecular, a identificação dos parasitas é mais precisa e confiável. Portanto, estudos futuros sobre a caracterização genotípica da contaminação parasitária em baratas externas são recomendados.

As baratas atuam como vetores mecânicos de vários parasitas entéricos e ectoparasitas, especialmente ácaros. Os parasitas entéricos, como larvas de helmintos e ovos de helmintos, podem ser identificados por microscopia. Portanto, as descobertas deste estudo podem espalhar a consciência para os proprietários de estabelecimentos de alimentos para combater a infestação de baratas, aumentando o nível de saneamento da área circundante.

DECLARAÇÃO DE SIGNIFICADO

Este estudo mostra a capacidade das baratas funcionarem como vetores mecânicos para entero e ectoparasitas. A partir deste estudo, é importante atentar para a resolução do problema do nível de saneamento, especialmente em estabelecimentos alimentares, a fim de evitar quaisquer doenças de origem alimentar relacionadas com infecções parasitárias e infestações causadas por baratas.

O autor agradece aos proprietários e trabalhadores de restaurantes e barracas de comida pela amável cooperação durante o período de estudo. Para esta pesquisa, a fonte de financiamento é da Universidade Islâmica Internacional da Malásia, sob o Projeto IIUM Research Initiative Grants Scheme Foundation (RIGS) No. 16-301-0465.

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16: Cheesbrough, M., 2006. Prática de Laboratório Distrital em Países Tropicais, Parte 2. 2ª Eds., Cambridge University Press, Cambridge, ISBN: 9780521676311, Pages: 440.


Vetores dipteranos e doenças associadas

Dr. Fredros Okumu é Diretor de Ciência do Instituto de Saúde Ifakara e Professor Adjunto do Instituto Africano de Ciência e Tecnologia Nelson Mandela, Tanzânia. Ele é biólogo de mosquitos e especialista em saúde pública, trabalhando em abordagens sustentáveis ​​para vigilância, prevenção e controle de doenças transmitidas por vetores. Ele também é apaixonado por melhorar os ecossistemas para jovens pesquisadores na África. Seu trabalho foi publicado internacionalmente em várias revistas científicas de prestígio. Ele tweeta @Fredros_Inc e ocasionalmente escreve posts para o blog Malaria World.

Dr. Marco Pombi é Professor Assistente de Parasitologia na Universidade Sapienza de Roma, Itália. Como médico entomologista, ele trabalhou extensivamente em países endêmicos de malária, explorando vários aspectos da biologia do vetor, desde a biologia evolutiva, especiação e genética dos mosquitos, até a ecologia e comportamento em relação ao seu papel no vetor. He has been developing new sampling methods for surveillance, monitoring and control of disease vectors.


Mechanical stretch exacerbates the cell death in SH-SY5Y cells exposed to paraquat: mitochondrial dysfunction and oxidative stress

Recent studies suggest that traumatic brain injury (TBI) and pesticide exposure increase the risk of Parkinson's disease (PD), but the molecular mechanisms involved remain unclear. Using an in vitro model of TBI, we evaluated the role of mitochondrial membrane potential (ΔΨm) and mitochondrial reactive oxygen species (ROS) induced by stretch on dopaminergic cell death upon paraquat exposure. Human dopaminergic neuroblastoma SH-SY5Y cells grown on silicone membrane were stretched at mild (25%) and moderate (50%) strain prior to paraquat exposure. We observed that moderate stretch (50% strain) increased the vulnerability of cells to paraquat demonstrated by the loss of plasma membrane integrity (propidium iodide-uptake) and decreased mitochondrial activity (MTT assay). Mitochondrial depolarization occurred immediately after stretch, while mitochondrial ROS increased rapidly and remained elevated for up to 4h after the stretch injury. Intracellular glutathione (GSH) stores were also transiently decreased immediately after moderate stretch. Cells treated with paraquat, or moderate stretch exhibited negligible mitochondrial depolarization at 48h post treatment, whereas in cells stretched prior to paraquat exposure, a significant mitochondrial depolarization occurred compared to samples exposed to either paraquat or stretch. Moderate stretch also increased mitochondrial ROS formation, as well as exacerbated intracellular GSH loss induced by paraquat. Overexpression of manganese superoxide dismutase (MnSOD) markedly diminished the deleterious effects of stretch in paraquat neurotoxicity. Our findings demonstrate that oxidative stress induced by mitochondrial dysfunction plays a critical role in the synergistic toxic effects of stretch (TBI) and pesticide exposure. Mitigation of oxidative stress via mitochondria-targeted antioxidants appears an attractive route for treatment of neurodegeneration mediated by TBI.

Palavras-chave: Mitochondria MnSOD Paraquat Reactive oxygen species Traumatic brain injury.

Declaração de conflito de interesse

Declaração de conflito de interesse

The authors declare that there are no conflicts of interest.

Bonecos

Main components of the cell…

Main components of the cell stretching device: 1) a top plate with glass…

Figure 2. Effect of stretch on SH-SY5Y…

Figure 2. Effect of stretch on SH-SY5Y cell survival/death in the presence of paraquat (PQ)

Figure 3. Effect of stretch on ΔΨm

Figure 3. Effect of stretch on ΔΨm

Cells were subject to the indicated strain levels.…

Figure 4. Time course of mitochondrial ROS…

Figure 4. Time course of mitochondrial ROS generation and intracellular GSH levels in SH-SY5Y cells…

Figure 5. Effect of stretch on ΔΨm…

Figure 5. Effect of stretch on ΔΨm of SH-SY5Y cells in the presence or absence…

Figure 6. Effect of stretch on mitochondrial…

Figure 6. Effect of stretch on mitochondrial ROS and intracellular GSH levels in SH-SY5Y cells…

Figure 7. Effect of MnSOD overexpression on…

Figure 7. Effect of MnSOD overexpression on paraquat induced cytotoxicity following stretch injury


Current Research in Parasitology & Vector-Borne Diseases

Current Research in Parasitology & Vector-Borne Diseases (CRPVBD) is a new primary research, gold open access journal from Elsevier. CRPVBD publishes Original Research articles, Short Communications, Letters, Opinion and Methodology articles as well as Reviews, Rapid Reviews and Graphical Reviews.

Current Research in Parasitology & Vector-Borne Diseases (CRPVBD) is a new primary research, gold open access journal from Elsevier. CRPVBD publishes Original Research articles, Short Communications, Letters, Opinion and Methodology articles as well as Reviews, Rapid Reviews and Graphical Reviews, that cover all aspects of human and animal parasitology e vector biology and vector-borne pathogens.

Current Research in Parasitology & Vector-Borne Diseases is a peer-reviewed gold open access (OA) journal and upon acceptance all articles are permanently and freely available. It is part of the Current Opinion and Research (CO+RE) suite of journals. All CO+RE journals leverage the Current Opinion legacy of editorial excellence, high-impact, and global reach, to ensure they are a widely read resource.

Current Research in Parasitology & Vector-Borne Diseases main research areas covered include (but are not restricted to):

  • Diversity, distribution, ecology, life cycles and transmission biology of parasites and arthropod vectors.
  • Identification, taxonomy, systematics and molecular phylogenetics of parasites and arthropod vectors.
  • Surveillance of indigenous and invasive arthropod vectors of public and veterinary health relevance: distribution, abundance and bionomics. Assessment of vector-pathogen relationships and the risk of pathogen transmission and associated disease.
  • Mathematical modelling of parasite and vector populations, parasitic infections, host-parasite and vector-pathogen interactions, and epidemiology of zoonotic and emerging/re-emerging infectious diseases.
  • Impact of environmental change on the transmission dynamics of parasites and the biology, ecology and distribution of intermediate hosts and vectors. Emergence, re(emergence) and globalisation of vectors, pathogens and hosts and One Health.
  • Parasitic and vector-borne diseases of humans, wildlife and domestic, farm and companion animals including studies on immunology, immunopathology, diagnosis and control.
  • Neglected tropical diseases (NTDs): diagnosis, monitoring, control and eradication/elimination. Model-based analyses addressing the transmission dynamics and control of Chagas disease, visceral leishmaniasis, human African trypanosomiasis, soil-transmitted helminths, schistosomiasis, lymphatic filariasis, onchocerciasis and trachoma.
  • Molecular aspects of parasite and vector diversity and evolution including molecular epidemiology and population genetics mechanisms of anti-parasite drug resistance and insecticide resistance in arthropod vectors.
  • Use of genomics, proteomics and bioinformatics technologies to study host-parasite/pathogen and parasite-host-microbiota interactions, and pathogen-microbiome interaction in vectors.
  • Economic impact assessments of parasitic infections or vector-borne diseases.
  • Outbreak investigations and impact assessments.

Topics which may be considered for the journal only if the following requirements are met:

  • Studies assessing prevalence rates of parasites and pathogens in arthropod vectors (ticks, mosquitoes, sand flies) that are não restricted to local or small regional scales e address gaps in large-scale temporal and/or spatial patterns of host-parasite and arthropod-pathogen systems.
  • Major reviews of the systematics and taxonomy of parasites and arthropod vectors that provide a novel background in the field.
  • Assessment of novel chemicals (attractants, adulticides of larvicides) if at an advanced stage with extensive laboratory data and chemical analysis to characterize active ingredients e field data on efficacy and biosafety.
  • Clinical trial studies if these include mechanistic insight into intervention efficacy from parasitology and/or vector data.

Current Research in Parasitology & Vector-Borne Diseases builds on Elsevier's reputation for excellence in scientific publishing and long-standing commitment to communicating reproducible biomedical research targeted at improving human health.


Cationic Lipid Transfection

Specially designed cationic lipids facilitate DNA & siRNA delivery into cells.

Electroporation

Mechanical transfection that electrical pulses to create temporary pores in cell membranes.

Na Vivo Transfection

Effective & easy-to-use na Vivo RNAi delivery reagents used to achieve phenotypic alternations in animals.

Cotransfection

Simultaneous transfection of 2 separate nucleic acid molecules.

RNAi & siRNA Transfection

Reverse transfect Invitrogen Stealth RNAi or siRNA into mammalian cells in a 24-well format

Transient Transfection

Rapid, scalable, high-yield protein production from transiently transfected suspension cultures.

Stable Transfection

Stable transfection introduces DNA into cells long-term and pass the introduced DNA to their progeny.

Calcium Phosphate Transfection

Reagents to enable the introduction of DNA into eukaryotic cells via calcium phosphate co-precipitation.

CRISPR transfection

We have optimized protocols to achieve high cleavage efficiency and ease of delivery.


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What Are the Applications of Vectors?

Because they are easy to generalize to multiple different topics and fields of study, vectors have a very large array of applications. Vectors are regularly used in the fields of engineering, structural analysis, navigation, physics and mathematics. They are also used on a case-by-case basis to model out different problems and scenarios mathematically.

Vectors are mathematical constructs that include a length and a direction. They can exist in any number of dimensions. Because of this, they are used to simply yet effectively convey information about objects or situations. One of the most common uses of vectors is in the description of velocity. By using vectors, physicists describe the movement of a car in motion using a simple line on a geometric plane. This same principle is also applied by navigators to chart the movements of airplanes and ships.

Vectors are also used to plot trajectories. The movements of any thrown object, such as a football, can be mapped with vectors. Using multiple vectors allows for the creation of a model that encompasses external forces like the wind. By utilizing vector addition on these different forces, mathematicians create an accurate estimate of the path of motion and distance traveled by the object.


Assista o vídeo: Mecânica - Aula 8 - Vetores como Referenciais (Junho 2022).


Comentários:

  1. Garr

    O que esse caso deve ser feito?

  2. Brodric

    Em vez de criticar, escreva suas opções.

  3. Fejin

    É visto, não o destino.

  4. Dataur

    Sim, a boa variante

  5. Kenzie

    Na minha opinião você está errado. Posso defender minha posição. Escreva-me em PM.

  6. Amnon

    Posso oferecer-lhe para visitar o site onde há muitos artigos sobre este assunto.

  7. Akilrajas

    Eu acredito que você está cometendo um erro. Proponho discuti-lo. Mande-me um e-mail para PM, vamos conversar.



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